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            伯樂電泳槽的使用方法

            2025-1-2  閱讀(530)

            分享:

            伯樂電泳槽的使用方法

            伯樂電泳槽(如 16580011658003)是一種廣泛用于核酸(DNA、RNA)和蛋白質(zhì)分離的實驗設(shè)備。以下將詳細(xì)介紹伯樂電泳槽的使用方法,從設(shè)備準(zhǔn)備到實驗完成的每個步驟都涵蓋其中,以幫助實驗人員高效、安全地操作該設(shè)備。


            一、設(shè)備準(zhǔn)備

            1.1 檢查設(shè)備

            • 確保電泳槽的所有組件(凝膠托架、電極組件、緩沖液槽等)完整無損。

            • 檢查電極線連接無破損,確保實驗安全。

            • 確保實驗環(huán)境干燥,避免設(shè)備短路。

            1.2 選擇緩沖液

            根據(jù)實驗?zāi)繕?biāo)選擇適合的緩沖液:

            • 核酸實驗:使用 TAE(Tris-Acetate-EDTA)或 TBE(Tris-Borate-EDTA)緩沖液。

            • 蛋白質(zhì)實驗:使用 SDS-Tris-Glycine 緩沖液。


            二、凝膠制備

            2.1 核酸實驗(瓊脂糖凝膠)

            1. 準(zhǔn)備瓊脂糖溶液

              • 根據(jù)目標(biāo)片段大小,選擇適合的濃度(通常 0.8%-2%)。

              • 例如:分離大片段 DNA(>1000 bp)用 0.8%-1% 的瓊脂糖;分離小片段 DNA(<500 bp)用 1.5%-2%。

              • 稱取適量瓊脂糖粉末,加入緩沖液(如 TAE 或 TBE),攪拌均勻。

            2. 加熱溶解

              • 在微波爐中加熱瓊脂糖混合液,直至溶解(無顆粒)。

              • 冷卻至約 50℃。

            3. 倒入凝膠托架

              • 將凝膠溶液倒入凝膠托架中,插入梳子(形成樣品槽),靜置約 20-30 分鐘直至凝膠固化。

            2.2 蛋白質(zhì)實驗(聚丙烯酰胺凝膠)

            1. 選擇合適的預(yù)制膠或自制膠

              • 使用伯樂的 Ready Gel(貨號:1610150)預(yù)制膠,節(jié)省時間。

              • 若自制,按照目標(biāo)分離分子量配置分離膠和濃縮膠,澆注至 Mini-PROTEAN 電泳槽內(nèi)。

            2. 安裝凝膠

              • 將固化后的聚丙烯酰胺凝膠固定在伯樂電泳槽的凝膠夾上。


            三、樣品準(zhǔn)備

            3.1 樣品處理

            • 核酸樣品

              • 使用 DNA 上樣緩沖液(如 6X Loading Dye)與樣品混合。

              • 緩沖液通常含有甘油或溴酚藍(lán),可提高樣品密度并便于追蹤遷移進(jìn)程。

            • 蛋白質(zhì)樣品

              • 使用 SDS 上樣緩沖液,將蛋白樣品變性處理(通常需 95℃ 水浴加熱 5 分鐘)。

              • 加入染料(如溴酚藍(lán))以便于電泳過程中觀察。

            3.2 樣品加樣

            1. 用加樣槍將樣品緩慢注入凝膠樣品槽,避免氣泡進(jìn)入。

            2. 在最后一個樣品槽中加入分子量標(biāo)準(zhǔn) Marker(DNA Ladder 或蛋白質(zhì) Marker),以對比目標(biāo)片段大小。


            四、電泳運行

            4.1 安裝電泳槽

            1. 將凝膠托架安裝到電泳槽中,確保凝膠正確放置。

            2. 加入緩沖液至液面,確保緩沖液覆蓋凝膠并接觸電極。

            4.2 連接電源

            1. 將電泳槽連接到伯樂 PowerPac 電源(如 1645050)。

            2. 確保電極線紅色接正極,黑色接負(fù)極。

            4.3 設(shè)置電壓和運行時間

            • 核酸實驗

              • 設(shè)置電壓為 50-150 V,運行時間 30-90 分鐘。

              • 根據(jù) DNA 片段大小調(diào)整運行時間,染料需運行至凝膠 2/3 處。

            • 蛋白質(zhì)實驗

              • 設(shè)置電壓為 100-200 V,運行時間 30-60 分鐘。

            4.4 運行監(jiān)控

            • 實驗過程中,觀察溴酚藍(lán)或其他染料的遷移情況。

            • 定期檢查緩沖液液位,確保電泳過程中不會干涸。


            五、實驗完成與結(jié)果處理

            5.1 停止電泳

            1. 關(guān)閉電源,斷開電極線。

            2. 小心取出凝膠托架。

            5.2 核酸實驗染色

            1. 將瓊脂糖凝膠浸入染色液中(如 Ethidium Bromide(EB)SYBR Green)。

              • EB 染色:浸泡 15-30 分鐘后脫色。

              • SYBR Green:快速染色,靈敏度更高。

            2. 使用脫色液(如去離子水)清洗凝膠,去除背景染色。

            5.3 蛋白質(zhì)實驗染色

            1. 將聚丙烯酰胺凝膠浸入染色液(如 考馬斯亮藍(lán)銀染液)。

            2. 根據(jù)染色液說明,完成染色和脫色步驟。

            5.4 結(jié)果觀察

            1. 使用伯樂的成像系統(tǒng)(如 Gel Doc EZ System,貨號:1708195)觀察凝膠條帶。

            2. 分析條帶的分子量和樣品濃度,記錄實驗結(jié)果。


            六、清潔與維護(hù)

            6.1 清潔設(shè)備

            1. 倒掉緩沖液,用去離子水清洗緩沖液槽。

            2. 拆卸電極組件,用濕布擦拭干凈。

            6.2 檢查組件

            • 檢查電極線和電泳槽是否有損壞或老化。

            • 如發(fā)現(xiàn)異常,及時更換或聯(lián)系供應(yīng)商維修。

            6.3 存放設(shè)備

            • 將設(shè)備存放在干燥、無塵的環(huán)境中,避免電極組件長期接觸水分。


            七、常見問題及解決方法

            7.1 電泳條帶彎曲

            • 原因:電場不均或緩沖液液位不足。

            • 解決:檢查緩沖液覆蓋是否完,確保電泳槽水平放置。

            7.2 條帶擴散

            • 原因:運行時間過長或緩沖液溫度過高。

            • 解決:縮短運行時間或更換冷卻緩沖液。

            7.3 樣品未遷移

            • 原因:電極線連接錯誤或電壓設(shè)置不當(dāng)。

            • 解決:檢查電極連接,確保正負(fù)極接線無誤。


            總結(jié)

            伯樂電泳槽操作簡單、高效,但需要嚴(yán)格遵守實驗規(guī)范,確保實驗結(jié)果準(zhǔn)確無誤。以上使用方法適用于伯樂的各種電泳槽設(shè)備(如 16580011658003),如果在使用過程中遇到特殊問題,建議參考產(chǎn)品手冊或聯(lián)系技術(shù)支持團(tuán)隊。通過規(guī)范操作,您將輕松實現(xiàn)核酸或蛋白質(zhì)的精準(zhǔn)分離與分析!


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