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            各種動物外周血淋巴細胞分離液說明書

            閱讀:2405      發(fā)布時間:2015-4-8
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            各種動物外周血淋巴細胞分離液說明書
            200ml
            室溫避光儲存,有效期少2 年。
            本分離液為Ficoll、羥yi基淀粉550與泛影酸葡甲胺的混合液??鼓庵苎稍诜蛛x液中分層。離心時,
            在Ficoll、羥yi基淀粉的作用下紅細胞與粒細胞聚集并迅速沉降;此時,淋巴細胞及其他單個核細胞仍處于
            分離液上層,紅細胞污染可忽略不計。大部分血小板可在細胞清洗低速離心過程中去除。 其他人及動物多
            種比重細胞分離液,因不同種屬不同比重分離液的細胞離散系數(shù)及細胞帶電不同,用戶在制定分離液時應(yīng)
            提供所需分離液的比重、動物種屬及被分離細胞的名稱。
            適用于從動物抗凝血液中分離淋巴細胞,無菌條件下所分離的淋巴細胞可用于細胞培養(yǎng)等。本品僅供
            科研使用。
            A.本實驗要求,在正常大氣壓下,分離液、分離樣本以及分離環(huán)境溫度為20℃±2℃。分離液在低溫時呈較
            高密度,在高溫時呈較低密度。細胞分離液從冰箱取出后,不可立即使用,操作前可將樣本和分離液復(fù)溫
            18-22℃。為獲得佳的實驗結(jié)果,好在取血后2小時內(nèi)進行實驗,血液提取后存放時間越長細胞活性
            越低。
            B.實驗過程中,如需稀釋血液或洗滌細胞,不可使用含Ca、Mg離子的緩沖液及培養(yǎng)液,其成分會導(dǎo)致血
            細胞凝集,大大降低細胞得率及純度。
            C.優(yōu)抗凝劑選擇:EDTA、枸櫞酸、肝素,其他抗凝劑也可使用,但會影響細胞活性。應(yīng)注意在血液稀
            釋過程中去除抗凝劑體積。
            D.實驗操作時,不可使用含粉手套、不可使用內(nèi)毒素含量過高的液體,手套中的粉末顆粒及高內(nèi)毒素會激
            活淋巴細胞從而降低細胞得率及活性。
            E.本實驗不可使用高聚合材質(zhì)(如聚苯乙烯)的塑料制品,其帶有的靜電作用將導(dǎo)致細胞貼壁影響分離效
            果。推薦使用未經(jīng)過堿處理的玻璃離心管。
            F.吸取過多的淋巴細胞層及分離液層會導(dǎo)致分離液交界處的粒細胞被吸出從而使混雜的粒細胞數(shù)量增加。
            吸取過多的淋巴細胞層上層溶液會導(dǎo)致血漿蛋白及血小板混雜。
            G.如需進行B、T細胞計數(shù),則需血液貯藏時間不得多于10小時,否則將導(dǎo)致細胞被激活,得率降低。
            H.為去除所混雜的血小板,可在分離液上層加上4-20%蔗糖梯度等滲溶液進行二次離心。
            I.細胞純度可在步驟10后使用瑞氏染色方法確定,細胞活性可用臺盼藍處理后觀察。
            J.由于各品牌離心機的性能不同,國內(nèi)南北地區(qū)溫度環(huán)境和四季的差異,可能影響分離效果,用戶可以調(diào)
            節(jié)離心轉(zhuǎn)數(shù)和離心時間,摸索佳的分離條件(具體分離條件各實驗室自定)。
            一、當血液樣本小于3ml時,實驗方法如下:
            1. 取一支15ml離心管,加入3ml分離液置于18-22℃復(fù)溫。
            2. 將血液樣本小心加于分離液之液面上。18-22℃,400g離心20分鐘。低溫(如4℃)離心會降低細胞
            得率。
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            3. 離心后,用吸管小心吸出分離液上層(包含淋巴細胞的細胞層)0.5cm以上的上清液部分,棄去。
            4. 用吸管小心吸取分離液層及淋巴細胞層于另一新離心管內(nèi)。
            5. 在步驟4中所得離心管中加入10ml PBS緩沖液或HBSS緩沖液混勻。
            6. 250g離心10分鐘。
            7. 棄上清。
            8. 用吸管以5ml PBS緩沖液或HBSS緩沖液重懸所得細胞。
            9. 250g離心10分鐘。
            10. 棄上清。重復(fù)步驟7、8、9,后以0.5ml后續(xù)試驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。
            二、當血液樣本大于3ml時,實驗方法如下:
            1. 當血液樣本粘度過高或血液樣本大于等于3ml時,優(yōu)稀釋方法:將血液于18-22℃以250g離心10分
            鐘,棄去血漿,補充添加生理鹽水,添加量為所棄去血漿體積的1.5-2倍,混勻備用。注:不當?shù)南♂尫椒?br>會降低細胞得率及活性。
            2. 取一支適當?shù)碾x心管,加入分離液(加入量與稀釋后的血液樣本體積相等),置于18-22℃復(fù)溫。
            3. 將經(jīng)稀釋處理的血液樣本小心加于分離液之液面上。18-22℃,400g離心20分鐘。低溫(如4℃)離
            心會降低細胞得率。注:加入血液樣本后,樣本及分離液總體積不得超過離心管總體積的三分之二。
            4. 剩余步驟同“情況一"中步驟3步驟10。
            pH 7.0-7.5
            滲透壓 280-340mOsmol/kg
            內(nèi)毒素 ≤0.5EU/ml
            無菌 直接接種培養(yǎng)14 天后培養(yǎng)基澄清
            澄明度及不溶性顆粒物 每50ml 溶液中含10μm 以上的不溶性微粒20 粒以下,
            含25μm 以上的不溶性微粒5 粒以下
            本分離液是敏光型的,應(yīng)在18℃-25℃避光保存,有效期兩年。啟封后置4℃保存,溶液變渾濁或污染
            細菌時,產(chǎn)品失效。保存溫度較低(10℃以下)時分離液易出現(xiàn)白色結(jié)晶,影響分離效果。

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