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            Biocoat血管生成系統(tǒng):內(nèi)皮細胞遷移

            閱讀:1077      發(fā)布時間:2017-9-8
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            BD產(chǎn)品貨號354143 354144 354147 354148

            儲存和運輸-20度儲存,干冰運輸。

            操作指南:

            血管生成過程中,內(nèi)皮細胞活化后表達基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs),可降解血管基底膜。BD Biocoat內(nèi)皮細胞侵襲系統(tǒng)提供了抗/促血管再生化合物的體外定量實驗?zāi)P汀?nèi)皮細胞侵襲系統(tǒng)包括:BD Falcon 24多孔板培養(yǎng)小室,含配套接收板和蓋子:BD FluoroBlok熒光屏蔽3.0μm孔徑PET膜,預(yù)包被Matrigel基質(zhì)。具體操作步驟如下:

            凍融:

            -20冰箱中取出包裝,使其自然升溫到室溫。

            遷移實驗:用BD鈣黃綠素Calcein AM熒光染色劑后標記

            細胞在BD FluoroBlokTM 基質(zhì)膜遷移后,采用熒光標記定量,只有遷移到下室的細胞可以計算得到。根據(jù)實時動力曲線的計算,推薦使用前標記法。

            2.1 原代HUVEC細胞的遷移能力取決于其來源和所傳代數(shù)。可以先對HUVEC遷移能力進行預(yù)篩選,推薦使用所傳代數(shù)較低,8代以內(nèi)的HUVEC。

            2.2 HUVEC細胞在血清培養(yǎng)基或生長因子VEGF優(yōu)化的培養(yǎng)基中生長,會對不同的內(nèi)皮細胞誘導(dǎo)劑產(chǎn)生不同的應(yīng)激反應(yīng)。

            建議在實驗前將細胞饑餓4-5小時,而后去除生長培養(yǎng)基,清洗細胞單層,加入含0.1%BSA的基礎(chǔ)培養(yǎng)基(不含血清或生長添加劑)。

            2.3 HUVEC細胞懸液可用胰酶消化后制備,然而,采用非酶技術(shù)消化細胞,更能保存細胞遷移的應(yīng)激能力??刹捎脤I(yè)培養(yǎng)基Specialty Media (產(chǎn)品號:S-014-B)作為非酶消化的離散劑。

            注意:大部分內(nèi)皮細胞培養(yǎng)基不具有足夠的血清濃度用于終止胰酶的消化。

            2.4 接種細胞濃度同實驗條件,如細胞來源,培養(yǎng)基,化學誘導(dǎo)物決定。推薦起始濃度為:4.0×105 cells/mL 24孔板或3.3×105/mL 96孔板。推薦接種體積分別為250μL75μL.

            2.5 推薦的化學誘導(dǎo)物體積分別為24孔板,750微升,96孔板,225微升。

            注意:為了減少氣泡和優(yōu)化熒光讀板的性能,推薦通過進樣口在配套板內(nèi)添加試劑。

            2.6 小室和對照小室在375%CO2環(huán)境下培養(yǎng)22±1小時。

            3、細胞遷移的計算:用BD鈣黃綠素Calcein AM 熒光染色劑后標記定量。

            注意:鈣黃綠素的濃度在4-5μg/mLHBSS溶液)。采用培養(yǎng)基用于熒光染色劑的稀釋會引起熒光染色劑自動水解,并帶來高背景熒光。

            對一塊完整的24孔板來說,需要一管溶解于12.5mL HBSS50μg的染色劑。96孔板則需要2管溶解于25mL HBSS50μg染色劑。

            3.1 在各管50μg鈣黃綠素中加入20 μL DMSO,加入150μL 37預(yù)熱的HBSS。將其轉(zhuǎn)入大量的HBSS中,用150μL預(yù)熱的HBSS清洗熒光染料的容器。

            3.2標記有2種方法

            *種適用于大規(guī)模孔板的自動化加樣操作。小室和孔板內(nèi)的培養(yǎng)基通過加樣口添加。通過進料口加入HBSS清洗孔板和膜底部(24孔板需500μL,96孔板需200μL),反復(fù)抽吸。在24孔板中加入500μL鈣黃綠素,96孔板中加入225μL

            第二種方法是手動操作較水數(shù)量的培養(yǎng)板。取出培養(yǎng)小室,輕搖后去除溶液。去除培養(yǎng)基后,將小室轉(zhuǎn)入另一塊新的培養(yǎng)板,該培養(yǎng)板在、預(yù)先溶有染色劑(24孔板,每孔500μL96孔板每孔225μL)。

            3.3 375%CO2環(huán)境下孵育90分鐘。

            3.4 培養(yǎng)小室的熒光定量信息通過熒光板讀板機底部讀數(shù)取得,激發(fā)波長494nm ,發(fā)射波長517nm。只有遷移后通過Martigel FluoroBlok膜的被標記的細胞才能被檢測。

            4、遷移研究:DilC12(3)熒光染色預(yù)標記法

            細胞接種于孔板之前先用染色劑標民,可用于均一化實驗,所產(chǎn) 生的實時動力數(shù)據(jù)可提示細胞通過基底膜侵襲的動力曲線,不需要分解和破壞各個時間點。

            4.1 1.所示凍融。

            4.2 不同濃度的各類熒光素對細胞標記的程度不同,標記濃度和時間,接種細胞濃度和化學誘導(dǎo)劑必須預(yù)先優(yōu)化。

            4.3 接種密度參見步驟2.在小室內(nèi)加入0.5 mL 37預(yù)熱的基本培養(yǎng)基,在37,CO2環(huán)境下孵育15-45分鐘,待用。

            4.4 培養(yǎng)小室的熒光定量信息通過熒光板讀板機底部讀數(shù)取得,激發(fā)波長549nm,發(fā)射波長565nm。只有遷移后通過Matrigel FluoroBlok膜的被標記的細胞才能被檢測。

            5、結(jié)果計算

            注意:數(shù)據(jù)可以用相對熒光值RFU或遷移百分比表示,后者在標準化數(shù)據(jù)處理中更有用。

            背景扣除:計算平均背景值,將其從各個孔板中扣除。

            遷移百分比%=受化學誘導(dǎo)的跨膜遷移的細胞平均熒光值/不受化學誘導(dǎo)的跨膜遷移的細胞平均熒光值×100

            自動化操作注意事項

            1 BD Falcon FluoroBlok 24孔板培養(yǎng)小室系統(tǒng)能適用于自動化操作系統(tǒng)。蓋子可以用標準機械手取走,也可用吸力取走。

            2 為了避免各孔間污染,孔板設(shè)定為一個統(tǒng)一的方向。為了培養(yǎng)小室匹配,確保Falcon的商標均在2者上方,面向同一個方向。

            3 對于96 孔板培養(yǎng)小室,需使用錐形頭或窄孔口的吸頭。寬口槍頭會粘在儲存口上,不利操作。

            4 任何規(guī)格的槍頭都能達到小室的兩邊。包括50μL,100μL, 200μL,250μL1000μL。

             

             

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